本试剂盒是以分子流行病学最新研究进展为基础,经工艺优化后形成的人型结核分枝杆菌基因分型产品。本产品利用结核分枝杆菌基因组中可发数目串联重复序列(variable-number tandem repeats,VNTR)多态性进行基因型分型区分临床菌株,是研究结核分枝杆菌分子流行病学和监测结核病传播状况的有力工具。与现有其它基于VNTR原理的结核分枝杆菌VNTR分型系统相比,这一分型系统对中国流行的菌株具有更强的分辨能力,因此特别适合于中国用户的需求。
通过对各PCR反应引物序列和预混反应液成份进行精心优化,使得本试剂盒具有很强的抗干扰力。不用户自配试剂相比,本产品显著提升了特异条带信号强度,降低了使用粗制模板(煮沸菌液)时非特异条带的出现率,使实验操作更加简便、快捷的同时,提高了检测成功率。本产品的预混反应液化学稳定性良好,能有效抵抗反复冻融(10次)和较长时间(一周)的室温环境,更好地适应了用户检测工作中的灵活性需求。
本试剂盒将人型结核分枝杆菌(MTBC)鉴定、非结核分枝杆菌(MOTT)及模板质量鉴定、结核分枝杆菌北京家族菌株鉴定,和后续的9位点VNTR分型鉴定整合在一个试剂盒中,使用户仅需一个试剂盒、12个PCR反应即可获得待测菌株基因型鉴定所需的完整信息。检测的分辨力指数(Hunter-Gaston index,HGI)可达0.989。并且,基因型鉴定结果可数字化记录,使得不同批次样本,不同地区,不同时间,不同研究者之间的实验数据可以很方便地进行比对和汇集分析,极大地提高了数据的使用效率。
对鉴定为VNTR-9基因型成簇(所有9个位点具有相同重复数)的样本,若要判定菌株间是否存在近期传播关系,需使用配套产品TB基因分型试剂盒HV-3(货号:WE0119),做进一步的分型鉴定。VNTR-9不HV-3两个产品的结合使用可将检测的HGI提升至0.993。关于TB基因分型试剂盒HV-3产品的更多信息请见其产品说明书。
组分 | 规格 | 应用 |
Mtb鉴定 | 1mL | 鉴定菌株是否属于人型结核分枝杆菌 |
16S rRNA | 1mL | DNA模板质量鉴定 |
RD105 | 1mL | 鉴定菌株是否属于北京基因型 |
QUB-11b | 1mL | 9位点VNTR基因分型检测 |
QUB-18 | 1mL | |
QUB-26 | 1mL | |
MIRU26 | 1mL | |
MIRU31 | 1mL | |
MIRU40 | 1mL | |
Mtub21 | 1mL | |
Mtub04 | 1mL | |
VNTR2372 | 1mL | |
Marker I | 1mL | DNA分子量标准I |
Marker II | 400μL | DNA分子量标准II |
保存:-20℃,有效期一年。
- 为避免污染,建议制备样本和配制PCR Mix在不同的地点内进行,并使用不同的移液器。
- 在样本DNA的收集,抽提和扩增的所有环节都应注意作好标记,同时防止不同样本间収生交叉污染。
- 常用试剂和耗材在实验前需高压灭菌。
- 每管PCR Mix中均含有不同的引物,不可混用。可根据实验需求一次性分装为不同的量,避免反复冻融。
- 为避免打开反应管时,反应液飞溅,开盖前请短暂离心,收集液体于管底。若不小心溅到手套或桌面上,应立刻更换手套并用75%酒精或稀酸擦拭桌面。
- 吸取时注意不要交叉污染PCR Mix,建议每次取Mix前用75%酒精擦拭移液器头2次。
- 实验前准备:1×TE缓冲液(pH=8.0)、0.5×TBE缓冲液、琼脂糖、溴化乙锭(EB)、普通PCR仪、DNA电泳设备和凝胶成像仪、0.2mlPCR反应管、八联排或96孔PCR管、不同规格的移液器:0.5~10μL和20~200μL。
一、DNA模板制备:
- 从固体培养基上刮取少量(1-2接种环)样本,重悬于100μL TE中,80℃灭活30分钟。
- 灭活后的菌株拿出P3实验室进行如下操作:
100℃煮沸10分钟(煮沸时EP管盖子可能会爆开,要尽量避免,扣紧EP管,不要让水进入管中),立即置于冰上2分钟,12000rpm(~13400×g)离心10分钟后,取上清置于另一无菌EP管中,做上标记,-20℃保存。
二、检测程序:
- 取出TB基因分型试剂盒VNTR-9,待液体平衡到室温后,轻微摇晃3~4次混匀,12000rpm离心5秒,使盖上的液体收集到管内。
- 结核分枝杆菌基因型分析:
- 鉴定样本是否为人型结核分枝杆菌(重要!此步骤不可省略!):
- PCR扩增:反应体系为20μL。
在每个PCR管中分别加入19μL Mtb鉴定PCR Mix,1μL DNA模板,混匀。 - 反应程序:
步骤 温度 时间 循环数 预变性 95℃ 10min 1 变性 94℃ 30s 30 退火 60℃ 30s 延伸 72℃ 30s 终延伸 72℃ 7min 1 - 制胶,电泳
使用1%的琼脂糖凝胶对PCR扩增产物进行电泳。
配制1%的琼脂糖凝胶,12×6cm胶盘制胶,每块胶为40mL。- 称取0.4g琼脂糖,加入40mL 0.5×TBE,在天平上称重后放入微波炉,高火加热2~3分钟,使琼脂糖完全溶化,摇匀,观察为均一透明溶液,无颗粒,再在天平称量,补入适量的双蒸水,以保持胶凝胶的浓度不叐影响。
- 待融化的凝胶冷却至55℃左右时加入2μL溴化乙锭(10μg/ml),轻轻旋转以充分混匀。用18齿的梳子制胶,将温热的凝胶浇灌入胶盘。
- 待凝胶完全凝结(室温下放置30分钟),小心拔出梳子,取出托盘,放入电泳槽中。电泳槽中加入0.5×TBE缓冲液,没过胶面1~2mm。
- PCR产物上样:每个孔中加入3μL PCR产物,每块胶上留一个孔加入5μL MarkerⅠ,每块胶上加一个H37Rv作为质量控制。电压150V,电泳时间为45分钟。结果显示:
- 称取0.4g琼脂糖,加入40mL 0.5×TBE,在天平上称重后放入微波炉,高火加热2~3分钟,使琼脂糖完全溶化,摇匀,观察为均一透明溶液,无颗粒,再在天平称量,补入适量的双蒸水,以保持胶凝胶的浓度不叐影响。
- 结果分析:
- 如果出现了850和361bp两条带,则说明模板DNA是人型结核分枝杆菌,可进入第F步(见后面)进行结核分枝杆菌北京基因型的分析鉴定,并进一步使用本试剂盒对该菌株进行9位点VNTR基因型分析鉴定。
- 如果只扩增出850bp的条带,则说明该菌株属于结核分枝杆菌复合群,但不是人型结核分枝杆菌,不适用本产品进行基因型分析鉴定。
- 如果没有特异性条带扩增,则说明该菌株是非结核分枝杆菌或模板DNA质量不好,不适用本产品进行基因型分析鉴定,可放弃该样本,或进入第E步(见后面),检测DNA模板的质量。
- 如果出现了850和361bp两条带,则说明模板DNA是人型结核分枝杆菌,可进入第F步(见后面)进行结核分枝杆菌北京基因型的分析鉴定,并进一步使用本试剂盒对该菌株进行9位点VNTR基因型分析鉴定。
- DNA模板质量鉴定:
若在以上步骤A-D中没有特异性条带扩增,则说明模板DNA质量不佳或该菌株并非结核分枝杆菌,出现此种情况请进行如下操作。- PCR扩增:反应体系为20μL。
在每个PCR管中分别加入19μL 16S rRNA PCR Mix,1μL DNA模板,混匀。 - 反应程序:
步骤 温度 时间 循环数 预变性 95℃ 10min 1 变性 94℃ 30s 30 退火 55℃ 30s 延伸 72℃ 30s 终延伸 72℃ 7min 1 - 电泳:1%琼脂糖凝胶电泳,150V电泳45分钟;
- 结果显示:
- 结果分析:
所有细菌中都存在16S rRNA序列,如果样本无扩增产物,说明模板DNA的数量或质量不足以进行VNTR基因分型检测。如果有扩增产物条带出现,则说明此菌株为非结核分枝杆菌,不应使用本试剂盒进行基因分型鉴定。
- PCR扩增:反应体系为20μL。
- 北京基因型菌株鉴定方法:
在确定菌株为结核分枝杆菌后,进一步区分是否属于北京基因型菌株。- PCR扩增:反应体系为20μL。
在每个PCR管中分别加入19μL RD105 PCR Mix,1μL DNA模板,混匀。 - 反应程序:
步骤 温度 时间 循环数 预变性 95℃ 10min 1 变性 94℃ 30s 30 退火 68℃ 30s 延伸 72℃ 3min 终延伸 72℃ 7min 1 - 电泳:1%琼脂糖凝胶电泳,150V电泳45分钟。
- 结果显示:
- 结果分析:
如果扩增产物为1495bp,该菌株为非北京基因型菌株;
如果扩增产物为786bp,该菌株为北京基因型菌株。
- PCR扩增:反应体系为20μL。
- PCR扩增:反应体系为20μL。
- 结核分枝杆菌9位点VNTR基因型分型法:对结核分枝杆菌临床菌株进行基因型分析,初步鉴定成簇菌株。
- PCR扩增:反应体系为20μL。
取9个PCR反应管,在每个PCR管中分别加入19μL QUB-11b,QUB-18,QUB-26,MIRU26,MIRU31,MIRU40,Mtub21,Mtub04,VNTR2372的PCR Mix,加入1μL DNA模板,混匀。 - 反应程序:
步骤 温度 时间 循环数 预变性 95℃ 10min 1 变性 94℃ 30s 30 退火 58℃ 30s 延伸 72℃ 30s 终延伸 72℃ 7min 1 - 制胶、电泳:
- 注意事项:
重要:每次实验需要设置阳性(H37Rv菌株DNA)和阴性对照(去离子水)。
关键:本实验是以琼脂糖凝胶电泳为基础来判读VNTR位点基因型,因此,为了使不同实验室结果能准确的相互比较,在电泳这一步必须要按照统一的标准操作,应注意以下几点:- 制胶所用梳子为18孔。
- 凝胶左右边上的两个孔由于在电泳过程中容易使条带发形,影响结果判读,舍弃不用,或者在其中一个孔点上阴性对
照,剩余16孔分为12个样本,3个DNA Marker和1个阳性对照。点样顺序分别为“1,2,M,3,4,5,6,M,7,8,9,10,M,11,12,H37Rv”,数字代表样本,M代表DNA Marker。 - PCR扩增产物进行首次电泳并使用Marker I时,凝胶浓度为1%,应使用两电极间距离不小于30厘米的电泳槽,电压为150V,时间为100~120分钟。
- 如果扩增产物片段过大(>1000bp),需要再次电泳并使用Marker II时,凝胶浓度为0.8%,应使用两电极间距离不小于30厘米的电泳槽,电压150V,时间为150分钟。
- 制胶所用梳子为18孔。
- 制胶以及电泳过程:
使用1%的琼脂糖凝胶对PCR扩增产物进行电泳。
配制1%的琼脂糖凝胶,12×12cm胶盘制胶,每块胶为80mL。- 称取0.8g琼脂糖,加入80mL 0.5×TBE,在天平上称重后放入微波炉,高火加热2~3分钟,使琼脂糖完全溶化,摇匀,观察为均一透明溶液,无颗粒,再在天平称量,补入适量的双蒸水,以保持胶的浓度不叐影响。
- 待融化的凝胶冷却至55℃左右时加入4μL溴化乙锭(10μg/ml),轻轻旋转以充分混匀。用18齿的梳子制胶,将温热的凝胶浇灌入12×12cm胶盘。
- 待凝胶完全凝结(室温下放置40分钟),小心拔出梳子,取出托盘,放入电泳槽中。电泳槽中加入0.5×TBE缓冲液,没过胶面1~2mm。
- 上样电泳:每块胶中加入12个样本(最边上的孔不加样),每个孔中加入3~5μL PCR产物,同时每块胶上加三个5μL DNA MarkerⅠ,加一个H37Rv作为质量控制(点样孔分布见下图)。电压150V,电泳时间为100~120分钟。本步骤是各位点最终读数是否准确的关键,需要统一按照此标准操作。
- 部分位点(QUB-18及QUB-26)在临床菌株中存在扩增产物大于1000bp的情况,对这些扩增产物再利用0.8%琼脂糖凝胶进行电泳,同时加入DNA MarkerⅡ作为条带大小对照,电压150V,电泳时间150分钟。
- 称取0.8g琼脂糖,加入80mL 0.5×TBE,在天平上称重后放入微波炉,高火加热2~3分钟,使琼脂糖完全溶化,摇匀,观察为均一透明溶液,无颗粒,再在天平称量,补入适量的双蒸水,以保持胶的浓度不叐影响。
- 注意事项:
- 结果分析:
根据各临床菌株扩增条带不Marker相对位置,利用凝胶分析软件读出每个条带的大小。利用各VNTR位点重复单元读数表及VNTR位点读数规则,计算出各菌株在该位点的重复单元数,每个VNTR位点重复单元读数表及VNTR位点读数规则附后。
结果报告:Excel文件(以下表格为结果报告输出格式举例)菌株编号 1 2 3 4 5 6 7 地区 SH SH SH SH SH SH SH 年份 2007 2007 2007 2007 2006 2007 2007 结核分枝杆菌 Y Y Y Y Y Y Y 北京基因型 N N Y Y Y Y Y 9位点VNTR结果 QUB-11b 0 0 5 5 5 5 6 QUB-18 1 1 9 9 9 9 9 MIRU26 2 6 8 8 8 8 8 QUB-26 1 4 9 9 9 9 9 Mtub21 1 1 5 5 5 5 5 MIRU31 1 1 1 2 2 2 2 Mtub04 0 0 0 3 3 3 3 MIRU40 3 3 3 3 2 2 2 VNTR2372 2 2 2 5 5 5 5
比较不同菌株9个VNTR位点的重复数,进行成簇分析:如果两个或两个以上菌株具有相同9位点基因型,则初步鉴定为成簇菌株,如有必要,可使用配套产品,TB基因分型试剂盒HV-3(货号:WE0119),做更精细的进一步分型鉴定。如果分离的菌株具有特异的9位点基因型,则鉴定为单一菌株。
- PCR扩增:反应体系为20μL。
- 鉴定样本是否为人型结核分枝杆菌(重要!此步骤不可省略!):
附录1.VNTR位点读数规则
VNTR位点 | 侧翼序列 大小(bp) | 重复单元 大小(bp) | 扩增片段长度(bp,以MTB H37Rv为例) =重复单元长度(bp)×重复单元个数 +不完整重复序列(bp)+侧翼序列长度(bp) |
QUB-11b | 67 | 69 | 422=69×5+10+67 |
QUB-18 | 182 | 78 | 621=78×5+49+182 |
QUB-26 | 129 | 111 | 708=111×5+24+129 |
MIRU26 | 243 | 48 | 387=48×3+0+243 |
MIRU31 | 108 | 52 | 264=52×3+0+108 |
MIRU40 | 354 | 54 | 408=54×14+0+354 |
Mtub21 | 92 | 57 | 206=57×2+0+92 |
Mtub04 | 137 | 51 | 269=51×2+30+137 |
VNTR2372 | 172 | 57 | 298=57×2+12+172 |
附录2.VNTR位点重复单元读数表
1 | 2 | 3 | 4 | 5 | |||||
QUB-11b | QUB-18 | QUB-26 | MIRU26 | MIRU31 | |||||
repeats | 片段大小 | repeats | 片段大小 | repeats | 片段大小 | repeats | 片段大小 | repeats | 片段大小 |
1 | 146 | 0 | 231 | 1 | 264 | 1 | 291 | 1 | 160 |
2 | 215 | 1 | 309 | 2 | 375 | 2 | 339 | 2 | 212 |
3 | 284 | 2 | 387 | 3 | 486 | 3 | 387 | 3 | 264 |
4 | 353 | 3 | 465 | 4 | 597 | 4 | 435 | 4 | 316 |
5 | 422 | 4 | 543 | 5 | 708 | 5 | 483 | 5 | 368 |
6 | 491 | 5 | 621 | 6 | 819 | 6 | 531 | 6 | 420 |
7 | 560 | 6 | 699 | 7 | 930 | 7 | 579 | 7 | 472 |
8 | 629 | 7 | 777 | 8 | 1041 | 8 | 627 | 8 | 524 |
9 | 698 | 8 | 855 | 9 | 1152 | 9 | 675 | 9 | 576 |
10 | 767 | 9 | 933 | 10 | 1263 | 10 | 723 | 10 | 628 |
10 | 1011 | 11 | 1374 | ||||||
11 | 1089 | 12 | 1485 | ||||||
12 | 1167 | ||||||||
注:QUB-11b重复单元大小为69bp。 H37Rv:67+69×5+10=422bp | 注:QUB-18重复单元大小为78bp,大多数临床菌株有一个49bp大小的不完整重复。 H37Rv:182+78×5+49 =621bp | 注:QUB-26重复单元大小为111bp,部分临床菌株有一个24bp大小的不完整重复。 H37Rv:129+111×5+24=708bp | 注:MIRU26位点重复单元大小为48bp。 H37Rv:243+48×3=387bp | 注:MIRU31重复单元大小为52bp,部分临床菌株有一个24bp大小的不完整重复。 H37Rv:108+52×3+24=264bp | |||||
6 | 7 | 8 | 9 | ||||||
MIRU40 | Mtub21 | Mtub04 | VNTR2372 | ||||||
repeats | 片段大小 | repeats | 片段大小 | repeats | 片段大小 | repeats | 片段大小 | ||
1 | 408 | 1 | 149 | 0 | 167 | 1 | 241 | ||
2 | 462 | 2 | 206 | 1 | 218 | 2 | 298 | ||
3 | 516 | 3 | 263 | 2 | 269 | 3 | 355 | ||
4 | 570 | 4 | 320 | 3 | 320 | 4 | 412 | ||
5 | 624 | 5 | 377 | 4 | 371 | 5 | 469 | ||
6 | 678 | 6 | 434 | 5 | 422 | 6 | 526 | ||
7 | 732 | 7 | 491 | 6 | 473 | 7 | 583 | ||
8 | 786 | 8 | 548 | 7 | 524 | 8 | 640 | ||
9 | 605 | 8 | 575 | 9 | 697 | ||||
10 | 662 | 10 | 754 | ||||||
注:MIRU40重复单元大小为54bp。 H37Rv:354+54×1=408bp | 注:Mtub21重复单元大小为57bp。 H37Rv:92+57×2=206bp | 注:Mtub04重复单元大小为51bp,部分临床菌株有一个30bp大小的不完整重复。 H37Rv:137+51×2+30=269bp | 注:VNTR2372重复单元大小为57bp,部分临床菌株有一个12bp大小的不完整重复。 H37Rv:172+57×2+12=298bp |
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